In Vitro Culture Performance of Allium scorodoprasum L. subsp. rotundum: Effects of Explant Type, Plant Growth Regulators, and Culture Conditions

Saliha Erdoğdu; Aysun Çelik; Naif Geboloğlu

doi:10.18016/ksutarimdoga.vi.1877846

TR EN

Allium scorodoprasum L. subsp. rotundum'un İn Vitro Kültür Performansı: Eksplant tipi, Bitki Büyüme Düzenleyicileri ve Kültür Koşullarının Etkileri

Öz

Bu çalışma, Allium scorodoprasum L. subsp. rotundum için bir mikro çoğaltım protokolü geliştirmek amacıyla yürütülmüştür. Eksplant olarak bitkinin soğanları, olgun tohumları, kökleri ve yaprakları kullanılmıştır. Eksplantlar 2 kültür ortamı (MS ve B5), 12 hormon kombinasyonu (2,4-D: 0.1, 1.0 ve 2.0 mg L⁻¹; kinetin: 0.1, 1.0 mg L⁻¹) ve iki farklı iklim ortamı (15 gün boyunca 25±2 °C sıcaklık ve sürekli karanlık, 25±2 °C sıcaklık, 16/8 saat aydınlık/karanlık ve 3000 lüks ışık yoğunluğu) altında kültüre alınmıştır. Çalışma sonucunda, yaprak eksplantlarından rejenerasyon elde edilememiştir; 8 haftalık inkübasyondan sonra yapraklar koyulaşarak kurumuştur. Kök eksplantlarında kallus oluşumu ise belirli kombinasyonlarda sağlanmıştır. Hormon kombinasyonları açısından en etkili kombinasyon B5 + 0.1 mg L⁻¹ 2,4-D + 0.1 mg L⁻¹ kinetin olmuştur. Karanlık koşullar ve B5 ortamı, MS ortamı ile karşılaştırıldığında kallus oluşumunda istatistiksel olarak önemli düzeyde bir artış sağlamıştır (P≤0.01). Ancak oluşan kalluslar bitkiye dönüşmeden koyulaşmıştır. Bulgular, A. scorodoprasum L. subsp. rotundum’un in vitro çoğaltımı için mevcut protokolün yeterli olmadığını, hormon dozu, besin ortamı ve kültür koşulları üzerinde daha fazla optimizasyon çalışması yapılması gerektiğini göstermektedir. Bu bulgular ayrıca alttürün in vitro çoğaltımı için temel bir protokolün geliştirilmesine katkıda bulunmakta ve gelecekteki in vitro çalışmalar için yol gösterici olmaktadır.Bu çalışma, Allium scorodoprasum L. subsp. rotundum için bir mikro çoğaltım protokolü geliştirmek amacıyla yürütülmüştür. Eksplant olarak soğan ve olgun tohumlardan elde edilen bitkiciklerin kök ve yaprak dokuları kullanılmıştır. Eksplantlar iki kültür ortamı (MS ve B5), on iki hormon kombinasyonu (2,4-D: 0.1, 1.0 ve 2.0 mg L⁻¹; kinetin: 0.1, 1.0 mg L⁻¹) ve iki farklı kültür koşulu (15 gün boyunca 25 ± 2 °C sıcaklık ve sürekli karanlık, 25 ± 2 °C sıcaklık, 16/8 saat aydınlık/karanlık ve 3000 lüks ışık yoğunluğu) altında kültüre alınmıştır. Yaprak eksplantlarından rejenerasyon elde edilememiştir; 8 haftalık inkübasyondan sonra yapraklar koyulaşarak kurumuştur. Kök eksplantlarında kallus oluşumu ise belirli kombinasyonlarda sağlanmıştır. Hormon kombinasyonları açısından en etkili ortam 0.1 mg L⁻¹ 2,4-D ve 0.1 mg L⁻¹ kinetin içeren B5 ortamı olmuştur. Karanlık koşullar ve B5 ortamı, MS ortamına kıyasla kallus oluşumunda önemli bir artış sağlamıştır (P≤0.01). Ancak oluşan kalluslar bitkiye dönüşmeden koyulaşmıştır. Bulgular, A. scorodoprasum L. subsp. rotundum’un in vitro çoğaltımı için mevcut protokolün yeterli olmadığını, hormon kombinasyonları, konsantrasyonları, besin ortamı ve kültür koşulları üzerinde daha fazla optimizasyon çalışması yapılması gerektiğini göstermektedir. Bu bulgular aynı zamanda alt türün in vitro çoğaltımı için temel bir protokolün geliştirilmesine katkıda bulunmaktadır ve gelecekteki in vitro çalışmaların planlanması için yol gösterici niteliktedir.

Anahtar Kelimeler

In Vitro Culture Performance of Allium scorodoprasum L. subsp. rotundum: Effects of Explant Type, Plant Growth Regulators, and Culture Conditions

Öz

This study was conducted to develop a micropropagation protocol for Allium scorodoprasum L. subsp. rotundum. Root and leaf tissues of plantlets derived from bulbs and mature seeds were used as the explant. The explants were tested on two culture media (MS and B5), twelve hormone combinations (2,4-D: 0.1, 1.0, and 2.0 mg L⁻¹; kinetin: 0.1, 1.0 mg L⁻¹), and two different culture conditions (25 ± 2 °C temperature and continuous darkness for 15 days, 25 ± 2 °C temperature, 16/8 hours light/dark, and 3000 lx light intensity). Regeneration could not be obtained from the leaf explants; after 8 weeks of culture, the leaves darkened and dried out. Callus formation in root explants was achieved in certain combinations. In terms of hormone combinations, the most effective was B5 medium containing 0.1 mg L⁻¹ 2,4-D and 0.1 mg L⁻¹ kinetin. Dark conditions, and the B5 medium provided a significant increase in callus formation compared to the MS medium (P≤0.01). However, the formed calluses darkened without transforming into plants. The findings indicate that the current protocol is insufficient for the in vitro propagation of A. scorodoprasum L. subsp. rotundum and that further optimization works are needed on hormone combinations, concentrations, culture medium, and culture conditions. These findings also contribute to the development of a basic protocol for the in vitro propagation of the subspecies and provide guidance for planning future in vitro studies.

Anahtar Kelimeler

Kaynakça

Acay, U., Toncer, O., Khavar, K. M., & Kizil, S. (2025). Using different phytohormones and putrescine as treatment boosters to induce regeneration from endospermic immature embryos of Allium tuncelianum (Kollmann) ) Özhatay, B. Mathew and Şiraneci. In Vitro Cellular & Developmental Biology – Plant, 61, 872-882. https://doi.org/10.1007/s11627-025-10538-0
Ahmed, M. E. (2022). In vitro propagation for conservation and genetic fidelity of the near threatened Dimocarpus longan plant. J Genet Eng Biotechnol., 20(1), 130. https://doi.org/10.1186/s43141-022-00406-4
Alızadeh, B., Royandazagh, S. D., Khawar, K. M., & Özcan, S. (2013). Mıcropropagatıon of garlıc chıves (Allıum tuberosum Rottl. Ex Sprang) usıng mesocotyl axıs. The Journal Of Animal & Plant Sciences, 23(2), 543-549. ISSN: 1018-7081.
Anonymous, (2025). Tubives, Allium scorodoprasum L. subsp. rotundum (L.) Stearn. http://194.27.225.161/yasin/tubives/index.php?sayfa=1vetax_id=8966 [Access date: 10.08.2025].
Arslan, N., Gürbüz, B., Gümüşçü, A., Özcan, S., Mirici, S., & Khawar, K. M. (2002). Cultivation of Sternbergia fisheriana (Herbert) Rupr. and a study on its morphological characteristics. Pakistan J. Bot., 34, 411-418.
Babaoğlu, M., Gürel, E., & Özcan, S. (2002). Bitki biyoteknolojisi I. Doku kültürü ve uygulamaları. Selçuk Üniversitesi Vakfı Yayınları. Konya. 374s.
Babaoğlu, M., Yorgancılar, M., & Akbudak, M. A. (2001). Doku kültürü: Temel laboratuar teknikleri, Bitki Biyoteknolojisi I, Selçuk Üniversitesi Vakfı Yayınları, Konya, 2001.
Babashpour-Asl, M., Movafeghi, A., & Zare, K. (2016). In vitro production of bulblet in Galanthus transcaucasicus Fomin, an endangered medicinal plant. Journal of Plant Physiology and Breeding, 6(2), 1-8.

Bach, A. & Sochacki, D. (2013). Propagation of ornamental geophytes: physiology and management systems. In Ornamental Geophytes. CRC Press: Boca Raton, FL, USA, 261-286. https://doi.org/10.1201/b12881
Banerjee, S., Upadhyay, N., Kukreja, A.K., Ahuja, P.S., Kumar, S., & Saha, G. C. (1996). Taxanes from in vitro cultures of the Himalayan yew Taxus wallichiana. Planta Medica, 62, 329-331.
Basyal, P., Rajbahak, S., Maharjhan, S., Ghimire, M., Thapa, C. B., & Pant, B. (2025). Micropropagation and genetic homogeneity assessment of curcuma aeruginosa Roxb. Plant Cell Tiss Organ Cult., 161(84). https://doi.org/10.1007/s11240-025-03118-y
Baytop, T. (1999). Türkiye’de Bitkiler ile Tedavi. 2. Baskı. İstanbul: Nobel Tıp Kitabevleri Ltd. Şti. Tayf Ofset Baskı. Benschop, M., Kamenetsky, R., Le Nard, M., Okubo, H., & De Hertogh, A. (2010). The global flower bulb industry: Production, utilization, research. Hortic. Rev., 36, 1-115.
Bidabadi, S. S. & Jain, S. M. (2020). Cellular, molecular, and physiological aspects of in vitro plant regeneration. Plants, 9, 702. https://doi.org/10.3390/plants9060702
Chandran, S., Raghu, A .V., & Mohanan, K. V. (2023). In vitro conservation of rare, endangered, and threatened plants. In: Sukumaran ST, Keerthi TR (eds) Conservation and sustainable utilization of bioresources. Springer Nature, 391-408. https://doi.org/10.1007/978-981-19-5841-0_16
Chen, C., Hu, Y., Ikeuchi, M., Jiao, Y., Prasad, K., Su, Y. H., Xiao, J., Xu, L., Yang, W., & Zhao, Z. (2024). Plant regeneration in the new era: from molecular mechanisms to biotechnology applications. Sci. China Life Sci., 67,1338-1367. https://doi.org/10.1007/s11427-024-2581-2
Dehon, L., Macheix, J. J., & Durand, M. (2002). Involvement of peroxidases in the formation of the brown coloration of heartwood in Juglans nigra. J. Exp. Bot. 53, 303-311.
Dunstan, D. I. & Short, K. C. (1977). Improved growth of tissue cultures of the onion, Allium cepa. Physiologia Plantarum, 41(1), 70-72. https://doi.org/10.1111/j.1399-3054.1977.tb01525.x
Erdoğdu, S. & Çelik, A. (2025a). Tokat florasında yetişen potansiyel bir süs bitkisi: Fibigia eriocarpa. BAHÇE 54(Özel Sayı 1), 413-418. https://doi.org/10.53471/bahce.1560283
Erdoğdu, S. & Çelik, A. (2025b). Tokat ili florasındaki bazı geofitlerin yetişme alanına ait toprakların fiziksel ve kimyasal özellikleri. Turkish Journal of Agriculture-Food Science and Technology,13(6), 1535-1542. https://doi.org/10.24925/turjaf.v13i6.1535-1542.7587
Gamborg, O. L., Miller, R. A., & Ojima, K. (1968). Nutrient requirements of suspension cultures of soybean root cells. Exp. Cell Res., 50(1),151-158. https://doi.org/10.1016/0014-4827(68)90403-5
Gantait, S., Mandal, N., Bhattacharyya, S., & Das, P. K. (2009). In vitro mass multiplication with genetic clonality in elephant garlic (Allium ampeloprasum L.). Journal of Crop and Weed, 5(1), 92-96.
George, P. S., Hall, M. A., De Klerk, G. R. (2008). Plant propagation by tissue culture. Springer, Dordrecht. ISBN 978-1-4020-5004-6 https://doi.org/10.1007/978-1-4020-5005-3_8
Guldigen, O. & Sensoy, S. (2015). May. Sirmo (Allium spp.), wild herb species used in herby cheese. In VII International Symposium on Edible Alliaceae 1143, 117-124). https://doi.org/10.17660/ActaHortic.2016.1143.17
Gökçe, P. & Avcı, S. (2020). In Vitro Regeneration Potential of Lotus maritimus L. (Leguminosae). KSU J. Agric Nat 23(4), 870-875. https://doi.org/10.18016/ksutarimdoga.vi.657729
Habibi, N., Suthar, R. K., & Purohit, S. D. (2009). Role of PGrs and inhibitors in induction and control of somatic embryogenesis in Themedaquadrivalvis. Indian J. Exp. Biol. 47, 198-203.
Hartman, H. T. & Kester, D. E., (1975). Plant Propagation: Principles and Practices. Prentice-Hall, New Jersey, 1975.
Hesami, M. & Jones, A. M. P. (2020). Application of artificial intelligence models and optimization algorithms in plant cell and tissue culture. Appl. Microbiol. Biotechnol., 104, 9449-9485. https://doi.org/10.1007/s00253-020-10888-2
Hill, K. & Schaller, G. E. (2013). Enhancing plant regeneration in tissue culture. Plant Signal Behav., 8(10), 212-224. https://doi.org/10.4161/psb.25709
Huong, B .T. T., Gioi, D. H., & Van Thang, B. (2017). Optimisation of an in vitro propagation protocol for a valuable Lily (Lilium spp.). Journal of Forestry Science and Technology, 5, 018-025.
Hussey, G. (1978). The application of tissue culture to the vegetative propagation of plants; Science Progress: Norwich, UK, 1978, 185-208.
Inagaki, N., Matsunaga, H., Kawano, T., Maekawa, S., & Terabun, M. (1992). In vitro micropropagation of Allium giganteum R. 1. callus and shoot forma-tion, and regeneration of plantlet through in vitro culture of emerged young leaves. Science Report of Faculty of Agriculture, 20, 47-53.
Işıkköylü, B. & Ünlükaplan, Y. (2025). Doğal Soğanlı Bitki Türlerinin Ekoturizmdeki Rolü: Adana İli Örneği. Bahçe Dergisi 54(Özel Sayı 1), 238-248. https://doi.org/10.53471/bahce.1557392
Kalyoncu Doğan, D. (2007). Bazı Yabani Tulipa Türlerinde İn Vitro Soğancık Üretimi (Tez no 233786). [Doktora Tezi, Ankara Üniversitesi, Biyoteknoloji Enstitüsü]. Yükseköğretim Kurulu Ulusal Tez Merkezi.
Kanazawa, T., Nıshı, Y., Kasaı, N., Harada, T., & Yakuwa, T. (1991). Studies on botanical characteristics of Allium victorialis L. ssp. Platyphyllum hult. ıv. plantlet regeneration through bud-multiplying body formation from apical meristem tissues cultured in vitro. Journal of The Faculty of Agriculture, Hokkaido University, 64(4), 279-291 Sapporo 060, Japan.
Kaya, E. (2014) Türkiye Geofitleri, Cilt I. Atatürk Bahçe Kültürleri Merkez Araştırma Enstitüsü, Yayın No:96, Yalova.
Khosroushahi, A.Y., Naderi-Manesh, H., & Simonsen, H. T. (2011). Effect of antioxidants and carbohydrates in callus cultures of Taxus brevifolia: evaluation of browning, callus growth, total phenolics and paclitaxel production. Bioimpacts, 1(1), 37. https://doi.org/10.5681/bi.2011.006
Kıran Acemi, R., Acemi, A., Çakır, M., Polat, E. G., & Özen, F. (2020). Preliminary screening the antioxidant potential of in vitro-propagated Amsonia orientalis: an example to sustainable use of raremedicinal plants in pharmaceutical studies. Sustain. Chem. Pharm., 17, 100302. https://doi.org/10.1016/j.scp.2020.100302
Kim, B. R., Seong, S. H., Kim, T. S., Kim, J. H., Se, C., Lee, H. N., Im, S., Kim, J. E., Jung, J. M., & Jeong, J. W. (2023). Antioxidant and Antidiabetic Effects of Leaves and Stems of Eurphorbiaceae Sp. Spring International Convention of The Pharmaceutical Society of Korea, p. 245.
Kim, K. W. & De Hertogh, A. (1996). Tissue culture of ornamental flowering bulbs (geophytes). Hortic. Rev., 18, 87-169. https://doi.org/10.1002/9780470650608.ch2
Kumar, S., Kashyap, M., & Sharma, D. R. (2005). In vitro regeneration and bulblet growth from Lily bulbscale explants as affected by retardants. sucrose and irradiance. Biologia Plantarum, 49, 629-632. https://doi.org/10.1007/s10535-005-0064-z.
Kumar, S., Kanwar, J. K., Sharma, D. R. (2006). In vitro propagation of Lilium. Adv Hortic Sci, 2(20), 181-188.
Lagram, K., El Merzougui, S., Boudadi, I. Ben El Caid, M., El Boullani, R., El Mousadik, A., & Serghini, M. A. (2023). In vitro shoot formation and enrooted mini-corm production by direct organogenesis in saffron (crocus sativus L.). Vegetos, 37, 1045-1050. https://doi.org/10.1007/s42535-023-00639-9
Long, Y., Yang, Y., Pan, G., & Shen, Y. (2022). New insights into tissue culture plant-regeneration mechanisms. Front. Plant Sci., 13, 926752. https://doi.org/10.3389/fpls.2022.926752
Lowenberg, J. R. (1969). Cyclamen callus culture. Can. J. Bot. 47, 2065-2067. https://doi.org/10.1139/b69-298
Martini, A. N. & Papafotiou, M. (2013). Season and explant origin affect phenolic content, browning of explants, and micropropagation of ×Malosorbus florentina (Zucc.) Browicz. HortScience, 48(1), 102-107. DOI: 10.21273/HORTSCI.48.1.102
Mehbub, H., Akter, A., Akter, M. A., Mandal, M. S. H., Hoque, M. A., Tuleja, M., & Mehraj, H. (2022). Tissue culture in ornamentals: cultivation factors, propagation techniques, and its application. Plants, 11, 3208. https://doi.org/10.3390/plants11233208
Mehrabi, A. A. & Fazeli-nasab, B. (2012). In-vitro culture of Allium scorodoprasum spp. rotundum: callus induction, somatic, embryogenesis and direct bulblet formation. Int. J. Agric. Crop Sci., 4, 1-7.
Mitic, V. D., Stankov-Jovanovic, V. P., Ilic, M. D., Cvetkovic, J. S., Dimitrijevic, M. V., & Stojanovic, G. S. (2014). In vitro antioxidant activity of methanol extract of Allium scorodoprasum. Bulg. J. Agric. Sci., 20, 1130-1136.
Monemi, M. B., Kazemitabar, S. K., Bakhshee Khaniki, G., Yasari, E., Sohrevardi, F., & Pourbagher, R. (2014). Tissue culture study of the medicinal plant leek Allium ampeloprasum L. Int. J. Mol. Cell. Med., 3(2), 118-125.
Murashige, T. & Skoog, F. (1962). A revised medium for rapid growth and bio-assays with tabocco tissue cultures. Physiol. Plant, 15, 473-497. https://doi.org/10.1111/j.1399-3054.1962.tb08052.x
Nair, A. S. & Seo, B. B. (1993). Plantlet regeneration from callus initiated from flower buds in the wild species Allium senescens var. minor. Plant Cell Tissue Organ Cult., 34, 205-207.
Nam, S. W. & Kim, H. Y. (2003). Plant regeneration through adventitious bud formation and callus induction from scales of Lilium lancifolium Thunb. Journal of Plant Biotechnology, 30(1), 53-58. DOI:10.5010/JPB.2003.30.1.053
Pandey, S., Sundararajan, S., Ramalingam, S., Baniya, K., & Pant, B. (2020). Rapid clonal propagation and valepotriates accumulation in cultures of Valeriana Jatamansi Jones, a high-value medicinal plant. J Appl Bot Food Qual., 93, 177-185. https://doi.org/10.5073/JABF Q.2020.093.022
Podwyszyńska, M., Orlikowska, T., Trojak-Goluch, A., & Wojtania, A. (2022). Application and improvement of in vitro culture systems for commercial production of ornamental, fruit, and industrial plants in poland. Acta Soc. Bot. Pol., 91, 914. https://doi.org/10.5586/asbp.914
Preece, J. S. (2008). Plant physiological factors affecting growth and morphogenesis. In Plant Propagation by Tissue Culture, Volume 1: The Background; Springer: Dordrecht, The Netherlands, 403-422. DOI: 10.1007/978-1-4020-5005-3_11
Rashid, A., Siddiqui, A. W, & Reinert, J. (1982). Subcellular aspects of origin and structure of pollen embryos of Nicotiana. Protoplasma, 113, 202-208. https://doi.org/10.1007/BF01280908
Reynolds, M. & Meachem, W. (1967). The garden bulbs of spring; Funk & Wagnalls: Madison, WI, USA, 1967; p. 237.
Salazar, C., Landeros, F., Bustos, E., Bravo, P., Pérez, C., Becerra, J., Rios, D., & Uribe, M. (2019). Propagation and bulblet enhancement of Rhodophiala pratensis from seeds germinated in vitro. Ciencia Investigación Agraria, 46(1), 12-22. https://doi.org/10.7764/rcia.v46i1.1847
Semerci, B. A. (2018). Allium scodoprasum subsp. rotundum, Allium staticiforme ve Allium subhirsutum türlerinin antimikrobiyal ve antioksidan aktivitelerinin araştırılması (Tez no 541539). [Yüksek Lisans Tezi, Sakarya Üniversitesi Fen Bilimleri Enstitüsü, Biyoloji Ana Bilim Dalı]. Yükseköğretim Kurulu Ulusal Tez Merkezi.
Stimart, D. P. & Ascher, P. D. (1978). Tissue culture of bulb scale sections for asexual propagation of Lilium longiflorum Thunb. Journal of the American Society for Horticultural Science, 103, 182-184.
Su, Y. H. & Zhang, X. S. (2014). The hormonal control of regeneration in plants. Curr. Top. Dev. Biol., 108, 35-69. https://doi.org/10.1016/B978-0-12-391498-9.00010-3
Susek, A., Javornik, B., & Bohanec, B. (2002). Factors affecting direct organogenesis from flower explants of Allium giganteum. Plant Cell Tissue and Organ Culture, 68(19), 27-33. https://doi.org/10.1023/A:1012950601175
Tasci, B. & Koca, I. (2015). Use of Allium scorodoprasum L. subsp. rotundum as food. In VII International Symposium on Edible Alliaceae 1143, 153-158. https://doi.org/10.17660/ActaHortic.2016.1143.22
Teshika, J. D., Zakariyyah, A. M., Zaynab, T., Zengin, G., Rengasamy, K. R., Pandian, S. K., & Fawzi, M. M. (2019). Traditional and modern uses of onion bulb (Allium cepa L.): A systematic review. Critical Reviews in Food Science and Nutrition, 59(1), 39-70. https://doi.org/10.1080/10408398.2018.1499074
Van Aartrijk, J. & Van der Linde, P. (1985). In vitro propagation of flower-bulb crops. In Proceedings of the Tissue culture as a plant production system for horticultural crops:, Beltsville, MD, USA, 20–23 October 1985; pp. 317–331.
Van der Valk, P., Scholten, O. E., Verstappen, R. C., & Dons, J. J. (1992). High frequency somatic embryogenesis and plant regeneration from zygotic embryo-derived callus cultures of three Allium species, Plant Cell Tissue Org Cult., 30, 181-191. https://doi.org/10.1007/BF00040020
Vijayalakshmi, U. & Shourie, A. (2016). Remedial effect of ascorbic acid and citric acid on oxidative browning of Glycyrrhiza glabra callus cultures. Biotechnologia, 97(3), 1-15. https://doi.org/10.5114/bta.2016.62355.
Yan, M. M., Xu, C., Kim, C. H., Um, Y. C., Bah, A. A., & Guo, D. P. (2009). Effects of eksplant type, culture media and growth regulators on callus induction and plant regeneration of Chinese jiaotou (Allium chinense). Scientia Horticulturae, 123, 124-128. https://doi.org/10.1016/j.scienta.2009.07.021
Yaralı, F. (2014). Soğan (Allium Cepa L.) ve Tunceli Sarımsağı (Allium Tuncelianum (Kollman) Özhatay, Matthew, Şiraneci)’nda Ovaryum ve Çiçek Tomurcuğu Kültürü Yoluyla Haploid Bitki Elde Etme Olanaklarının Araştırılması (Tez no 386373). [Doktora Tezi, Ankara Üniversitesi, Fen Bilimleri Enstitüsü, Bahçe Bitkileri Ana Bilim Dalı]. Yükseköğretim Kurulu Ulusal Tez Merkezi.
Yasemin, S., Koksal, N., & Buyukalaca, S. (2023). Indirect organogenesis and in vitro bulb formation of Pancratium maritimum. Plant Cell. Tissue and Organ Culture (PCTOC), 154(3), 713-727. https://doi.org/10.1007/s11240-023-02545-z
Yıldız, M., Onde, S., & Ozgen, M. (2007). Sucrose effects on phenolic concentration and plant regeneration from sugarbeet leaf and petiole explants. Journal of Sugar Beet Research. 44(1/2), 1-5. DOI:10.5274/jsbr.44.1.1
Yıldız, M., Özcan, S., & Er, C. (2002). Keten (Linum usitatissimum L.) Bitkisinde farklı eksplant kaynaklarının tesadüfi sürgün rejenerasyonuna etkisi. Türk Biyoloji Dergisi, 26(1), 37-40.
Ziv, M. & Lilien-Kipnis H. (2000). Bud regeneration from inflorscense explans for rapid propagation of geophytes in vitro. Plant Cell Reports, 19(9), 845-850.
Ziv, M. (1997). The contribution of biotechnology to breeding, propagation and disease resistance in geophytes. In Proceedings of the VII International Symposium on Flowerbulbs, Herzliya, Israel, 1 December 1997. https://doi.org/10.17660/ActaHortic.1997.430.37

Ayrıntılar

Birincil Dil

İngilizce

Konular

Bitki Biyoteknolojisi, Sera Bitkileri Yetiştirme ve Islahı, Bahçe Bitkileri Yetiştirme ve Islahı (Diğer)

Bölüm

Araştırma Makalesi

Yazarlar

Saliha Erdoğdu ^*
0000-0001-8639-2938
Türkiye

Aysun Çelik
0000-0001-5289-2176
Türkiye

Naif Geboloğlu
0000-0003-2495-7088
Türkiye

Erken Görünüm Tarihi

7 Kasım 2026

Yayımlanma Tarihi

-

Gönderilme Tarihi

30 Ocak 2026

Kabul Tarihi

29 Haziran 2026

Yayımlandığı Sayı

Yıl 2026 Sayı: Advanced Online Publication

DOI

https://doi.org/10.18016/ksutarimdoga.vi.1877846

IZ

https://izlik.org/JA95MJ39EN

Kaynak Göster

RIS / Bibtex

APA

Erdoğdu, S., Çelik, A., & Geboloğlu, N. (2026). In Vitro Culture Performance of Allium scorodoprasum L. subsp. rotundum: Effects of Explant Type, Plant Growth Regulators, and Culture Conditions. Kahramanmaraş Sütçü İmam Üniversitesi Tarım ve Doğa Dergisi, Advanced Online Publication. https://doi.org/10.18016/ksutarimdoga.vi.1877846

AMA

1.Erdoğdu S, Çelik A, Geboloğlu N. In Vitro Culture Performance of Allium scorodoprasum L. subsp. rotundum: Effects of Explant Type, Plant Growth Regulators, and Culture Conditions. Kahramanmaraş Sütçü İmam Üniversitesi Tarım ve Doğa Dergisi. 2026;(Advanced Online Publication). doi:10.18016/ksutarimdoga.vi.1877846

Chicago

Erdoğdu, Saliha, Aysun Çelik, ve Naif Geboloğlu. 2026. “In Vitro Culture Performance of Allium scorodoprasum L. subsp. rotundum: Effects of Explant Type, Plant Growth Regulators, and Culture Conditions”. Kahramanmaraş Sütçü İmam Üniversitesi Tarım ve Doğa Dergisi, sy Advanced Online Publication. https://doi.org/10.18016/ksutarimdoga.vi.1877846.

EndNote

Erdoğdu S, Çelik A, Geboloğlu N (07 Kasım 2026) In Vitro Culture Performance of Allium scorodoprasum L. subsp. rotundum: Effects of Explant Type, Plant Growth Regulators, and Culture Conditions. Kahramanmaraş Sütçü İmam Üniversitesi Tarım ve Doğa Dergisi Advanced Online Publication

IEEE

[1]S. Erdoğdu, A. Çelik, ve N. Geboloğlu, “In Vitro Culture Performance of Allium scorodoprasum L. subsp. rotundum: Effects of Explant Type, Plant Growth Regulators, and Culture Conditions”, Kahramanmaraş Sütçü İmam Üniversitesi Tarım ve Doğa Dergisi, sy Advanced Online Publication, Kas. 2026, doi: 10.18016/ksutarimdoga.vi.1877846.

ISNAD

Erdoğdu, Saliha - Çelik, Aysun - Geboloğlu, Naif. “In Vitro Culture Performance of Allium scorodoprasum L. subsp. rotundum: Effects of Explant Type, Plant Growth Regulators, and Culture Conditions”. Kahramanmaraş Sütçü İmam Üniversitesi Tarım ve Doğa Dergisi. Advanced Online Publication (07 Kasım 2026). https://doi.org/10.18016/ksutarimdoga.vi.1877846.

JAMA

1.Erdoğdu S, Çelik A, Geboloğlu N. In Vitro Culture Performance of Allium scorodoprasum L. subsp. rotundum: Effects of Explant Type, Plant Growth Regulators, and Culture Conditions. Kahramanmaraş Sütçü İmam Üniversitesi Tarım ve Doğa Dergisi. 2026. doi:10.18016/ksutarimdoga.vi.1877846.

MLA

Erdoğdu, Saliha, vd. “In Vitro Culture Performance of Allium scorodoprasum L. subsp. rotundum: Effects of Explant Type, Plant Growth Regulators, and Culture Conditions”. Kahramanmaraş Sütçü İmam Üniversitesi Tarım ve Doğa Dergisi, sy Advanced Online Publication, Kasım 2026, doi:10.18016/ksutarimdoga.vi.1877846.

Vancouver

1.Saliha Erdoğdu, Aysun Çelik, Naif Geboloğlu. In Vitro Culture Performance of Allium scorodoprasum L. subsp. rotundum: Effects of Explant Type, Plant Growth Regulators, and Culture Conditions. Kahramanmaraş Sütçü İmam Üniversitesi Tarım ve Doğa Dergisi. 07 Kasım 2026;(Advanced Online Publication). doi:10.18016/ksutarimdoga.vi.1877846

Allium scorodoprasum L. subsp. rotundum'un İn Vitro Kültür Performansı: Eksplant tipi, Bitki Büyüme Düzenleyicileri ve Kültür Koşullarının Etkileri

Öz

Anahtar Kelimeler

In Vitro Culture Performance of Allium scorodoprasum L. subsp. rotundum: Effects of Explant Type, Plant Growth Regulators, and Culture Conditions

Öz

Anahtar Kelimeler

Kaynakça

Ayrıntılar

Birincil Dil

Konular

Bölüm

Yazarlar

Erken Görünüm Tarihi

Yayımlanma Tarihi

Gönderilme Tarihi

Kabul Tarihi

Yayımlandığı Sayı

DOI

IZ

Kaynak Göster

e-ISSN: 2619-9149